无缝克隆的原理:
在载体末端和引物末端应具有15-25个同源碱基(同源臂)。通过T5核酸外切酶、DNA聚合酶、DNA连接酶,三种酶同时发挥功能,从而达到单片段或多片段与载体连接的技术。
T5核酸外切酶:5‘→3’端消化DNA片段,
形成粘性末端;DNA聚合酶:填补缺口;
DNA连接酶:两条DNA 单链黏合起来。
无缝克隆的特点
传统分子克隆
无缝克隆
传统分子克隆和无缝克隆对比:
实验流程
1.载体制备
载体的线性化:酶切(单酶切、双酶切)或反向 PCR 扩增。
① 酶切制备
使用限制性内切酶进行载体线性化时,推荐使用双酶切方法进行,其次是单酶切。
注意:
1:经双酶切进行线性化的载体无需去磷酸化,经单酶切则需要去磷酸化;
2:酶切完成后,应将快速内切酶失活或将目的产物进行纯化后再用于重组反应。
② 反向 PCR 扩增制备
载体末端引物设计:
反向 PCR 扩增制备线性化载体需要使用的引物;
为了减少扩增突变的引入,推荐使用高保真 PCR Mix 进行扩增,推荐使用预线性化的质粒作为模板,以减少环状质粒模板残留对克隆阳性率的影响。
注意:以环状质粒为模板时,PCR 产物需要使用 DpnI 等甲基化敏感型限制性内切酶对扩增产物进行处理,或对产物进行胶回收纯化。
2.插入片段制备
引物设计原则:
通常使用PCR扩增的方法来获得目的片段,PCR 引物的5' 端必须包含与其相邻片段(插入片段或载体)末端同源的15~25nt(推荐 18 nt)序列 , 以保证扩增产物的5' 端和3' 端分别与相邻片段形成重叠序列。目的片段 PCR 引物包括:载体与插入片段连接处引物、插入片段与片段连接处引物。
插入片段正向扩增引物:
5' —上游载体末端正向同源序列+酶切位点(可选)+ 基因特异性正向扩增序列—3’
插入片段反向扩增引物:
3‘ —基因特异性反向扩增序列 + 酶切位点(可选)+ 下游载体末端反向同源序列—5’
载体与插入片段、插入片段与片段连接处引物、载体反向扩增引物设计
制作最终序列图谱
引物设计工具
1.在线设计
2.SnapGene软件更加专业,这款软件用来绘制图谱,编辑序列,设计引物,重组克隆都非常方便
3.无缝克隆
1、体系配制;
a. 最适载体用量(ng) = 0.02 × 载体碱基对数,即 0.03 pmol(单片段、多片段适用);
b. 最适片段用量(ng)= 0.04 × 片段碱基对数(单片段);最适片段用量(ng)= 0.02 × 片段碱基对数(多片段)。
注1:单片段重组反应,若单个插入片段的长度大于载体,则应将载体与插入片段的计算公式互换;
注2:单片段重组反应,若单个插入片段的长度小于200bp,则插入片段应使用 5 倍的用量;
注3:多片段重组反应,各个插入片段的用量应不少于10ng,使用上述公式计算最适使用量低于此值时, 直接使用 10ng;
注4:若按上述公式计算出的线性化载体用量低于50ng 或高于200ng,建议按50ng或 200ng用量使用;
注5:线性化载体过长,插入片段过长或片段数过多,克隆阳性率均会降低。
2、体系反应;
1、配制完成后,用移液器轻轻吸打混匀各组分,避免产生气泡,切勿涡旋;
2、将反应体系置于50℃,反应5~60min。
3、将反应液离心管置于冰上冷却,之后进行转化或者储存于-20℃
注1:推荐使用PCR仪等温控精准的仪器进行反应,反应时间不足或太长克隆效率均会降低;
注2:插入1~2个片段时,推荐反应时间为5~1 min;插入3~5个片段时,推荐反应时间为15~30min;
注3:当载体骨架在10kb以上或插入片段总长在4kb以上时,推荐延长反应时间至30~60min;
注4:建议在50℃反应完成后进行瞬时离心,将反应液收集至管底。
注5:-20℃ 储存的重组产物,建议1周内使用完毕。
4.转化
① 将克隆用的化学感受态细胞置于冰上解冻;
② 取 5~10μl重组产物反应液,加入到100μl感受态细胞中,缓慢吸打混匀,冰上放置30 min;
③ 42℃热激 45~60 sec,冰浴5min;
④ 加500μlSOC或LB培养基,37℃振荡培养40~60min(200rpm);
⑤ 将菌液均匀涂布在含有对应抗生素的平板上,倒置于37℃过夜培养。
注 1:推荐使用转化效率>108CFU/μg的感受态细胞;
注 2:菌落数取决于PCR产物与线性化载体的数量和纯度。
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